Ciclo Formativo de Grado Superior en Laboratorio Clínico y Biomédico

La calidad del análisis empieza antes de que la muestra llegue al analizador. Este módulo te forma en todas las fases del proceso preanalítico: desde la recepción del paciente y la obtención de la muestra biológica hasta su procesamiento, conservación y distribución a los distintos laboratorios. Una fase crítica de la que depende en gran medida la fiabilidad del resultado final.

Objetivos

• Planificar y realizar la obtención de muestras biológicas (sangre, orina, esputo, heces, líquidos orgánicos) siguiendo los protocolos establecidos y aplicando las medidas de seguridad adecuadas.
• Acondicionar las muestras biológicas para su análisis aplicando técnicas de procesamiento preanalítico y respetando los criterios de calidad.
• Gestionar el sistema de identificación, registro y trazabilidad de las muestras a lo largo de todo el proceso analítico.
• Aplicar la normativa de seguridad biológica y de gestión de residuos sanitarios en el laboratorio clínico.

Contenidos

• El proceso preanalítico: fases del proceso analítico (preanalítica, analítica y postanalítica), fuentes de error preanalítico y su impacto en el resultado final.
• Obtención de muestras biológicas: venopunción, punción capilar y arterial; obtención de orina (muestra aislada, de 24 horas, cateterismo), heces, esputo, exudados y líquidos corporales. Técnicas de obtención pediátrica.
• Procesamiento preanalítico: tipos de tubos y aditivos (EDTA, citrato, heparina, gel separador), orden de llenado, centrifugación, alicuotado y condiciones de conservación de cada tipo de muestra.
• Identificación y trazabilidad: sistemas de identificación de pacientes y muestras, registro en el LIS (Laboratory Information System), códigos de barras y trazabilidad de la muestra a lo largo del proceso.
• Seguridad biológica y gestión de residuos: niveles de contención biológica, equipos de protección individual (EPI) en el laboratorio, gestión de residuos sanitarios según su categoría y protocolo de actuación ante exposición accidental.

El módulo de mayor carga horaria del primer curso y la base técnica de todo lo demás. Las técnicas generales de laboratorio son las herramientas comunes que se aplican en cualquier área del laboratorio clínico y biomédico: microscopía, espectrofotometría, electroforesis, cromatografía, centrifugación y el manejo correcto de los equipos e instrumentos de medida. Un dominio imprescindible para cualquier técnico de laboratorio.

Objetivos

• Manejar con destreza el instrumental y los equipos básicos del laboratorio clínico: micropipetas, balanzas, pH-metros, espectrofotómetros y centrífugas.
• Aplicar las técnicas microscópicas (óptica, de fluorescencia) para la visualización y análisis de preparaciones biológicas.
• Preparar soluciones, reactivos y medios de cultivo aplicando los cálculos de concentración adecuados.
• Aplicar técnicas de separación y análisis (electroforesis, cromatografía, espectrofotometría) en el procesamiento de muestras biológicas.

Contenidos

• Instrumental básico de laboratorio: micropipetas y sistemas de pipeteo automático (calibración y mantenimiento), balanzas analíticas, pH-metros, agitadores, baños termostatizados y autoclaves.
• Microscopía: microscopio óptico (partes, principios ópticos, ajuste de Köhler, objetivos y mantenimiento), microscopía de contraste de fases, microscopía de fluorescencia y microscopía electrónica (principios básicos).
• Preparación de soluciones y reactivos: cálculos de concentración (molaridad, normalidad, porcentaje), preparación de tampones y soluciones stock, diluciones seriadas y control de calidad de reactivos.
• Técnicas espectrofotométricas: fundamentos de la espectrofotometría UV-Vis, ley de Lambert-Beer, espectrofotómetros de laboratorio y aplicaciones en el laboratorio clínico (cuantificación de proteínas, enzimas, metabolitos).
• Técnicas de separación: electroforesis en gel de agarosa y poliacrilamida (PAGE), inmunoelectroforesis, cromatografía (HPLC, cromatografía de intercambio iónico, exclusión molecular) e isoelectroenfoque.
• Centrifugación: tipos de centrífugas (refrigerada, ultracentrífuga), tipos de rotores, cálculo de fuerzas centrífugas (RCF) y aplicaciones en el laboratorio clínico.

La biología molecular ha transformado el diagnóstico clínico. Las técnicas de PCR, la secuenciación genética y los estudios cromosómicos son hoy herramientas de laboratorio habituales que permiten diagnosticar enfermedades genéticas, infecciones víricas, cánceres y predisposiciones hereditarias con una precisión sin precedentes. Este módulo te forma en estas técnicas de vanguardia.

Objetivos

• Extraer y purificar ácidos nucleicos (ADN y ARN) de distintos tipos de muestras biológicas aplicando los protocolos adecuados.
• Aplicar técnicas de amplificación de ácidos nucleicos (PCR, PCR en tiempo real) para el diagnóstico molecular de enfermedades infecciosas y genéticas.
• Preparar cultivos celulares para el estudio citogenético y elaborar cariotipos a partir de células en metafase.
• Aplicar técnicas de hibridación (FISH, hibridación Southern/Northern) para la detección de alteraciones genéticas.

Contenidos

• Fundamentos de biología molecular: estructura del ADN y el ARN, dogma central de la biología molecular, replicación, transcripción y traducción. Bases del diagnóstico molecular.
• Extracción y purificación de ácidos nucleicos: métodos de extracción de ADN y ARN (fenol-cloroformo, columnas de sílice, kits comerciales), cuantificación (espectrofotometría, fluorometría) y control de calidad.
• Técnicas de amplificación: PCR convencional (componentes, fases del ciclo, tipos de cebadores), PCR en tiempo real (qPCR) y sus aplicaciones en el diagnóstico de infecciones víricas y bacterianas, y análisis de expresión génica.
• Citogenética: cultivo de células para estudios cromosómicos (linfocitos, células tumorales, líquido amniótico), obtención de metafases, técnicas de bandeo cromosómico (GTG, QFQ), elaboración e interpretación de cariotipos.
• Técnicas de hibridación: FISH (hibridación in situ fluorescente) y sus aplicaciones en oncología y diagnóstico prenatal, hibridación Southern y Northern, arrays de CGH (array-CGH).
• Secuenciación: principios de la secuenciación Sanger y de la secuenciación masiva (NGS), aplicaciones clínicas y bioinformática básica para el análisis de resultados.

Para interpretar un resultado de laboratorio, necesitas entender qué ocurre en el organismo cuando enferma. Este módulo te proporciona la base de fisiopatología que el técnico de laboratorio clínico necesita: cómo se alteran las funciones orgánicas en las enfermedades más frecuentes y qué cambios en los parámetros analíticos se asocian a cada proceso patológico.

Objetivos

• Comprender la fisiopatología de los principales sistemas orgánicos (cardiovascular, respiratorio, renal, hepático, endocrino) y su reflejo en los parámetros analíticos.
• Relacionar las alteraciones bioquímicas, hematológicas e inmunológicas con los procesos patológicos que las originan.
• Interpretar los valores de referencia y los valores críticos de los principales parámetros analíticos desde una perspectiva fisiopatológica.

Contenidos

• Fisiopatología cardiovascular: alteraciones del ritmo cardíaco, cardiopatía isquémica, insuficiencia cardíaca y marcadores bioquímicos (troponina, BNP, CK-MB). Alteraciones lipídicas y aterosclerosis.
• Fisiopatología renal: insuficiencia renal aguda y crónica, síndrome nefrótico y nefrítico, y parámetros analíticos asociados (creatinina, urea, filtrado glomerular, proteinuria, sedimento urinario).
• Fisiopatología hepática: hepatitis, cirrosis, colestasis y fallo hepático agudo. Enzimas de función hepática (transaminasas, GGT, fosfatasa alcalina, bilirrubina) y pruebas de síntesis hepática.
• Fisiopatología endocrina: diabetes mellitus (tipos, complicaciones, control metabólico), patología tiroidea, patología suprarrenal y sus parámetros analíticos.
• Fisiopatología hematológica: anemias (ferropénica, megaloblástica, hemolítica), trombopatías y coagulopatías. Leucemias y linfomas: bases fisiopatológicas y alteraciones en el hemograma.
• Fisiopatología infecciosa e inflamatoria: respuesta inflamatoria aguda y crónica, marcadores de inflamación (PCR, VSG, procalcitonina, ferritina) y fisiopatología de las principales infecciones bacterianas, víricas y parasitarias.

Las ciencias forenses aplican las técnicas del laboratorio clínico y biomédico a la investigación criminal y al sistema de justicia. Este módulo optativo te introduce en ese fascinante campo: cómo se recogen, conservan y analizan las pruebas biológicas de una escena del crimen, qué papel juegan el ADN, las huellas dactilares, la toxicología y la histopatología en el proceso judicial, y cómo se elabora un informe pericial.

Objetivos

• Conocer la situación actual de las ciencias forenses y su papel en el sistema de justicia penal.
• Identificar los procedimientos de recogida, embalaje y custodia de muestras de interés forense respetando la cadena de custodia.
• Comprender la metodología de trabajo de los distintos laboratorios forenses y las técnicas de análisis aplicadas a cada tipo de evidencia.
• Interpretar los informes periciales emitidos por especialistas forenses en el contexto de una investigación criminal.

Contenidos

• Introducción a las ciencias forenses: concepto y ámbito de las ciencias forenses, relación entre la ciencia y el proceso judicial, tipos de laboratorios forenses (toxicología, biología, dactiloscopia, documentoscopia) y el dictamen pericial.
• Toxicología forense: tipos de tóxicos de interés forense (venenos, drogas de abuso, alcohol etílico), técnicas de detección y cuantificación (cromatografía de gases, HPLC, inmunoensayos) y su papel en la investigación de envenenamientos e intoxicaciones.
• Huellas dactilares, labiales y plantares: tipos de huellas (visibles, latentes, moldeadas), técnicas de revelado (polvo alumínico, cianoacrilato, ninidrina), identificación dactiloscópica y sistemas AFIS.
• ADN forense: análisis de STRs (Short Tandem Repeats) para la identificación genética, bases de datos de ADN forense (CODIS), perfiles genéticos en la investigación criminal, pruebas de paternidad y ADN mitocondrial en restos óseos.
• Hematología forense: identificación de manchas de sangre (pruebas de orientación: luminol, bencidina; pruebas de certeza: Takayama, Teichmann), determinación de grupo sanguíneo ABO en manchas y análisis de la cinemática de las manchas de sangre (BPA).
• Estudios perimortem y postmortem: cambios postmortem (livor mortis, rigor mortis, putrefacción) y su papel en la estimación del intervalo postmortem, lesiones perimortem vs. postmortem y participación del técnico de laboratorio en la autopsia.
• Técnicas histoquímicas en medicina forense: preparación de muestras tisulares para estudio forense, técnicas de tinción especiales para la identificación de lesiones, inhalación de humo, intoxicaciones y determinación de la causa de la muerte a partir del estudio histológico.

El laboratorio clínico y biomédico es uno de los sectores sanitarios con mayor demanda de profesionales cualificados en España. Este módulo trabaja tu perfil profesional desde el primer curso: salidas laborales en el sistema público y privado, construcción de una presencia profesional sólida y estrategias de acceso a un mercado que valora la excelencia técnica y la especialización.

Objetivos

• Identificar los puestos de trabajo del sector y las competencias asociadas al título de Técnico Superior en Laboratorio Clínico y Biomédico.
• Desarrollar estrategias de acceso al empleo en el sector sanitario, incluyendo los procesos selectivos para el empleo público.
• Conocer los derechos y obligaciones laborales en el sector sanitario.

Contenidos

• Salidas profesionales: laboratorios de análisis clínicos (hospitales públicos y privados, clínicas, centros de salud), laboratorios de referencia y de diagnóstico in vitro, laboratorios de investigación biomédica, laboratorios forenses y de sanidad ambiental, y banca de sangre y donación de órganos.
• Acceso al empleo público: OPE (Oferta Pública de Empleo) en el SERMAS para técnicos de laboratorio, proceso de selección (oposición, concurso-oposición), interinidades y listas de empleo. Acceso a laboratorios de la Comunidad de Madrid.
• Perfil profesional y búsqueda de empleo: redacción del currículum adaptado al sector sanitario, carta de presentación, preparación de pruebas teóricas y prácticas de selección y estrategias de búsqueda activa.
• Marco laboral sanitario: estatuto marco del personal estatutario, convenio de laboratorios privados, modalidades de contratación en el sector sanitario, derechos y obligaciones y prevención de riesgos laborales en el laboratorio.

El análisis bioquímico es el área de mayor volumen de trabajo en un laboratorio clínico. Miles de determinaciones diarias de glucosa, colesterol, creatinina, enzimas hepáticas o proteínas permiten al médico diagnosticar, monitorizar y tratar a sus pacientes. Este módulo te forma en las técnicas y los analizadores que hacen posible esa capacidad diagnóstica.

Objetivos

• Realizar determinaciones bioquímicas en sangre, orina y otros fluidos biológicos utilizando técnicas manuales y analizadores automáticos.
• Aplicar los controles de calidad en el laboratorio de bioquímica para garantizar la fiabilidad de los resultados.
• Interpretar los resultados bioquímicos en el contexto de los valores de referencia y los valores de alarma.
• Mantener y calibrar los analizadores bioquímicos de acuerdo con los procedimientos establecidos.

Contenidos

• Bioquímica clínica básica: determinación de glucosa (métodos enzimáticos, HbA1c), perfil lipídico (colesterol total, HDL, LDL, triglicéridos), proteínas totales y fracciones, y urea, creatinina y ácido úrico.
• Enzimología clínica: determinación de enzimas de relevancia diagnóstica (transaminasas AST y ALT, LDH, CK, amilasa, lipasa, fosfatasa alcalina, GGT) y sus aplicaciones en el diagnóstico de patología hepática, cardíaca y pancreática.
• Electrolitos y equilibrio ácido-base: determinación de sodio, potasio, cloro, bicarbonato y calcio. Gasometría arterial e interpretación del equilibrio ácido-base (acidosis, alcalosis metabólica y respiratoria).
• Analizadores automáticos de bioquímica: principios de funcionamiento de los analizadores de química clínica (fotometría, turbidimetría, nefelometría, potenciometría), programación, calibración y mantenimiento preventivo.
• Control de calidad en bioquímica: control de calidad interno (cartas de Levey-Jennings, reglas de Westgard), control de calidad externo (programas de evaluación externa de la calidad, PEAC) y criterios de aceptación/rechazo de resultados.

La reacción antígeno-anticuerpo es el principio que sustenta decenas de técnicas diagnósticas de uso cotidiano en el laboratorio clínico: desde un test rápido de COVID-19 hasta la detección de marcadores tumorales o el diagnóstico de enfermedades autoinmunes. Este módulo te forma en las técnicas de inmunodiagnóstico y su aplicación en el laboratorio clínico moderno.

Objetivos

• Aplicar las técnicas de inmunodiagnóstico (ELISA, inmunofluorescencia, quimioluminiscencia, Western blot) para la detección de antígenos y anticuerpos en muestras biológicas.
• Realizar técnicas de compatibilidad transfusional aplicando los protocolos de seguridad del banco de sangre.
• Interpretar los resultados de las pruebas de inmunodiagnóstico en el contexto clínico.

Contenidos

• Fundamentos de inmunología aplicada al diagnóstico: respuesta inmune humoral y celular, tipos de anticuerpos (IgG, IgM, IgA, IgE, IgD) y su producción, antígenos y haptenos, y principio de la reacción antígeno-anticuerpo.
• Técnicas inmunoenzimáticas: ELISA (directo, indirecto, tipo sándwich y de captura), interpretación de curvas estándar y cálculo de resultados, y automatización de las técnicas ELISA.
• Técnicas de inmunofluorescencia: inmunofluorescencia directa e indirecta (IFI), patrones de fluorescencia antinuclear (ANA), ANCA y otros autoanticuerpos, y su aplicación en el diagnóstico de enfermedades autoinmunes.
• Técnicas de alta sensibilidad: electroquimioluminiscencia (ECLIA), quimioluminiscencia (CLIA) y electroquimioluminiscencia (ECL): principios y aplicaciones en marcadores tumorales, hormonas y marcadores cardíacos.
• Inmunohematología y banco de sangre: grupos sanguíneos ABO y Rh, pruebas de compatibilidad (prueba cruzada, Coombs directo e indirecto), determinación del grupo y detección de anticuerpos irregulares.

El laboratorio de microbiología clínica es el que identifica al agente causante de una infección y determina qué antibiótico puede eliminarla. Un trabajo que tiene consecuencias directas sobre el tratamiento del paciente. Este módulo te forma en el procesamiento de muestras microbiológicas, los cultivos bacterianos y fúngicos, la identificación de microorganismos y el antibiograma.

Objetivos

• Procesar las muestras biológicas para el estudio microbiológico aplicando las técnicas de inoculación, incubación e identificación adecuadas a cada tipo de muestra y microorganismo.
• Realizar tinciones microbiológicas (Gram, Ziehl-Neelsen, auramina) para la identificación preliminar de bacterias.
• Identificar los microorganismos más frecuentes utilizando pruebas bioquímicas, sistemas automatizados y espectrometría de masas (MALDI-TOF).
• Realizar e interpretar antibiogramas para determinar la sensibilidad de los microorganismos a los antibióticos.

Contenidos

• Procesamiento de muestras microbiológicas: tipos de muestra (hemocultivo, urocultivo, exudado, esputo, líquido cefalorraquídeo), medios de cultivo (agar sangre, agar chocolate, agar MacConkey, agar CHROMID), técnicas de siembra y condiciones de incubación.
• Tinciones microbiológicas: tinción de Gram (principio, procedimiento e interpretación), tinción de Ziehl-Neelsen para micobacterias, tinción de auramina-rodamina y otras tinciones especiales (PAS, Grocott).
• Identificación de bacterias: pruebas bioquímicas de identificación (catalasa, oxidasa, coagulasa, urease), sistemas automatizados de identificación (VITEK 2, Phoenix), espectrometría de masas MALDI-TOF y sus ventajas en la identificación rápida.
• Antibiograma: métodos de determinación de la sensibilidad antibiótica (disco-difusión Kirby-Bauer, microdilución en caldo, E-test), interpretación de los halos de inhibición y CMI, y criterios EUCAST y CLSI.
• Micología clínica y parasitología: identificación macroscópica y microscópica de los hongos más frecuentes (Candida, Aspergillus), técnicas de diagnóstico de parásitos (frotis directo, flotación, cultivo de Leishmania) y diagnóstico de infecciones parasitarias.
• Virología clínica: diagnóstico virológico (cultivo celular, detección de antígenos, PCR viral), bioseguridad en el manejo de muestras víricas y principales virus de interés clínico.

El hemograma es el análisis más solicitado en cualquier laboratorio clínico y la puerta de entrada al diagnóstico de las enfermedades de la sangre. Este módulo te forma en el análisis hematológico completo: hemograma automatizado, morfología de sangre periférica, estudio de la coagulación y técnicas de diagnóstico de las enfermedades hematológicas más frecuentes.

Objetivos

• Realizar el hemograma completo utilizando analizadores automáticos de hematología e interpretar los parámetros obtenidos.
• Elaborar y examinar extensiones de sangre periférica, identificando las distintas series celulares y sus alteraciones morfológicas.
• Aplicar las técnicas básicas de estudio de la hemostasia (tiempo de protrombina, APTT, fibrinógeno, dímero D) e interpretar sus resultados.
• Aplicar técnicas de diagnóstico de anemias y otras hemopatías (citometría de flujo, electroforesis de hemoglobina).

Contenidos

• Hematología general: hematopoyesis y maduración celular, series eritroide, mieloide y linfoide, y parámetros del hemograma (eritrocitos, leucocitos, plaquetas, índices eritrocitarios).
• Analizadores automáticos de hematología: principios de funcionamiento (impedancia eléctrica, dispersión de luz láser, fluorescencia), parámetros del hemograma completo y banderas de alarma. Calibración, control de calidad y mantenimiento.
• Morfología de sangre periférica: elaboración de extensiones de sangre periférica, tinciones (May-Grünwald-Giemsa, Wright), identificación de la morfología normal y patológica de eritrocitos (esquistocitos, drepanocitos, esferocitos), leucocitos y plaquetas.
• Hemostasia: fisiología de la coagulación, pruebas básicas de hemostasia (tiempo de protrombina/INR, APTT, tiempo de trombina, fibrinógeno), dímero D y su aplicación en el diagnóstico de TVP y tromboembolismo pulmonar.
• Diagnóstico de hemopatías: citometría de flujo en hematología (inmunofenotipado de leucemias), electroforesis de hemoglobina (HbS, HbC, talasemias), diagnóstico de anemias ferropénica y megaloblástica, y estudio de médula ósea.

La bibliografía científica, los manuales de los analizadores, los protocolos de los sistemas de control de calidad internacionales y las últimas publicaciones sobre técnicas diagnósticas están en inglés. Un técnico de laboratorio clínico que domina el inglés técnico amplía enormemente sus posibilidades profesionales, tanto en España como en el extranjero. Este módulo te forma en ese inglés especializado.

Objetivos

• Comprender y producir documentación técnica en inglés relativa al laboratorio clínico y biomédico.
• Comunicarse en inglés en situaciones profesionales del laboratorio: comunicación con proveedores, soporte técnico internacional y presentación de resultados.
• Manejar el vocabulario especializado de la hematología, bioquímica, microbiología e inmunología clínica en inglés.

Contenidos

• Documentación técnica en inglés: lectura e interpretación de manuales de analizadores, procedimientos normalizados de trabajo (SOPs), fichas de seguridad de reactivos (MSDS) y artículos científicos del sector.
• Comunicación profesional: comunicación con proveedores y soporte técnico internacional, presentación de resultados analíticos, participación en reuniones técnicas y elaboración de informes de laboratorio en inglés.
• Vocabulario especializado: terminología de hematología, bioquímica clínica, microbiología, inmunología, biología molecular y control de calidad en inglés. Abreviaturas y acrónimos del laboratorio clínico internacional.
• Comprensión lectora científica: lectura e interpretación de artículos de revistas científicas (PubMed, Lancet, NEJM), valoración de la evidencia científica y actualización continua en el sector.

La segunda parte del itinerario prepara la transición al mercado laboral sanitario con plenas garantías. Profundizarás en las competencias que el sector más valora en un técnico de laboratorio —rigor, precisión, trabajo en equipo y comunicación con el equipo clínico— y planificarás tu carrera a medio plazo, incluyendo el acceso a estudios universitarios de Ciencias de la Salud.

Objetivos

• Reflexionar sobre las propias competencias técnicas y transversales desarrolladas durante el ciclo.
• Planificar el itinerario formativo y profesional a medio plazo, incluyendo el acceso a estudios universitarios.
• Desarrollar habilidades de comunicación y trabajo en equipo en el entorno del laboratorio clínico.

Contenidos

• Competencias del técnico de laboratorio: rigor analítico, gestión de la incertidumbre, trabajo en equipo multidisciplinar, comunicación de resultados críticos y gestión de situaciones de urgencia.
• Planificación de carrera: acceso a estudios universitarios de Ciencias de la Salud (Bioquímica, Farmacia, Biología, Medicina: convalidaciones), especialización en áreas del laboratorio (biología molecular, citometría, parasitología), oportunidades en investigación biomédica y acceso a laboratorios internacionales.
• Comunicación en el entorno sanitario: comunicación de valores críticos al clínico, coordinación con otros departamentos del hospital, documentación de incidencias analíticas y participación en reuniones de calidad.
• Marco laboral en sanidad: estatuto marco del personal estatutario, prevención de riesgos laborales específicos del laboratorio clínico (riesgo biológico, químico, radiológico) y ergonomía en el puesto de trabajo.

El laboratorio clínico del siglo XXI es un laboratorio digitalizado: analizadores de alto rendimiento conectados en red, sistemas de gestión de la información del laboratorio (LIS/LIMS), inteligencia artificial para la verificación automática de resultados y telemedicina. Este módulo te prepara para trabajar en ese entorno digital y comprender su impacto en el trabajo del técnico de laboratorio.

Objetivos

• Comprender el impacto de la digitalización en los procesos del laboratorio clínico y biomédico.
• Utilizar los sistemas de gestión de la información del laboratorio (LIS/LIMS) para la gestión de muestras, resultados y documentación.
• Identificar las aplicaciones de la inteligencia artificial y la automatización en el laboratorio clínico.

Contenidos

• Sistemas de información del laboratorio (LIS/LIMS): funcionalidades del LIS (petición electrónica, trazabilidad de muestras, emisión de resultados, gestión de control de calidad), integración con el HIS (sistema de información hospitalario) y comunicación con el médico peticionario.
• Automatización en el laboratorio clínico: sistemas de automatización total del laboratorio (TAL: carga automática, transporte de muestras, centrifugación, alicuotado y archivado automático), ventajas y limitaciones.
• IA y aprendizaje automático en el laboratorio: aplicaciones de IA en la verificación automática de resultados, la detección de valores críticos y la identificación morfológica de células sanguíneas (hematología digital).
• Telemedicina y laboratorio: laboratorio clínico en el entorno de la telemedicina, punto de cuidado (POCT) y dispositivos de diagnóstico in vitro en el domicilio del paciente, y ciberseguridad de los datos del laboratorio.

El laboratorio clínico genera una cantidad significativa de residuos biológicos, químicos y plásticos, y consume grandes cantidades de energía y reactivos. La sostenibilidad en el laboratorio no es solo una cuestión ética: es también una estrategia de eficiencia y reducción de costes. Este módulo te forma en los principios y las prácticas de un laboratorio más sostenible.

Objetivos

• Comprender el impacto ambiental de las actividades del laboratorio clínico y aplicar criterios de sostenibilidad en el trabajo diario.
• Gestionar correctamente los residuos del laboratorio según su categoría y normativa aplicable.
• Identificar oportunidades de reducción del consumo de reactivos, plásticos y energía en el laboratorio clínico.

Contenidos

• Impacto ambiental del laboratorio clínico: tipos de residuos generados (biológicos, químicos, citotóxicos, radiactivos), consumo de agua, energía y plásticos de un solo uso, y huella de carbono del laboratorio hospitalario.
• Gestión de residuos sanitarios: clasificación de residuos sanitarios (Grupos I-IV), normativa de gestión (RD 1429/2022 y normativa autonómica), contenedores homologados, frecuencia de recogida y trazabilidad de los residuos peligrosos.
• Laboratorio sostenible (Green Lab): iniciativas de laboratorio sostenible (My Green Lab, Sustainability in the Lab), reducción del consumo de plásticos (uso de material reutilizable), optimización del consumo de reactivos y gestión eficiente de los equipos de frío.
• ODS en el laboratorio clínico: contribución del laboratorio hospitalario a los ODS (especialmente ODS 3, 12 y 13), prácticas de compra sostenible de reactivos y equipos, y participación en iniciativas de sostenibilidad hospitalaria.

Un módulo de especialización elegido en función del perfil profesional de cada alumno. La oportunidad de profundizar en un área del laboratorio clínico y biomédico con mayor demanda en el mercado laboral o de especial interés científico.

Objetivos

• Ampliar y consolidar las competencias adquiridas durante el ciclo en un área de especialización concreta.
• Adaptar el itinerario formativo a las necesidades del mercado laboral y al perfil profesional del alumno.

Contenidos

• Los contenidos de este módulo varían según la especialización elegida y se concretan en la oferta de CampusFP para cada curso académico.

El proyecto intermodular integra las competencias adquiridas durante el ciclo en un proyecto técnico completo del ámbito del laboratorio clínico y biomédico: un estudio diagnóstico completo, la implantación de una nueva técnica analítica, un proyecto de mejora del control de calidad o cualquier otro reto real del sector. Es la demostración de tu madurez técnica y profesional.

Objetivos

• Integrar de forma transversal las competencias técnicas adquiridas durante el ciclo en un proyecto de laboratorio real.
• Aplicar la metodología científica en el planteamiento y desarrollo del proyecto.
• Presentar y defender el proyecto con criterios profesionales ante un tribunal evaluador.

Contenidos

• Definición del proyecto: justificación, objetivos, hipótesis, materiales y métodos, y plan de trabajo.
• Desarrollo: realización de las determinaciones analíticas o del estudio planificado, recogida de datos y análisis estadístico básico de los resultados.
• Documentación y presentación: redacción de la memoria técnica del proyecto y defensa oral ante el tribunal evaluador.

La Fase de Formación en Empresa te sitúa en un laboratorio clínico real. Realizarás prácticas en hospitales, laboratorios de referencia, clínicas privadas o laboratorios de investigación biomédica de Madrid, aplicando las competencias del ciclo en el análisis de muestras reales de pacientes bajo la supervisión de profesionales en activo y la tutorización de CampusFP.

Objetivos

• Aplicar las competencias técnicas del ciclo en un entorno de laboratorio clínico real bajo supervisión tutorizada.
• Integrarse en el equipo del laboratorio, comprendiendo los flujos de trabajo reales y los estándares de calidad del centro.
• Completar la formación en aquellos aspectos que solo pueden desarrollarse trabajando con muestras reales de pacientes.

Contenidos

• Primer curso (60 h): primera toma de contacto con el entorno del laboratorio clínico, observación de los procesos analíticos reales y participación supervisada en las tareas de la fase preanalítica.
• Segundo curso (440 h): integración plena en el equipo del laboratorio, participación activa en las distintas áreas analíticas y evaluación conjunta por tutor del centro y tutor académico.